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本制品主要用于裂解组织样本、细胞样本，提取样品中的过氧化物酶。该试剂仅用于科研领域，不适用于临床诊断或其他用途。

超氧化物岐化酶(Superoxide Dismutase,SOD)是含金属辅基的酶，能催化超氧化物阴离子发生岐化作用，生成过氧化氢(H2O2)和氧气(O2)，是生物体内一种重要的抗氧化酶，由于超氧自由基是不稳定的的自由基，寿命极短，SOD活性一般用间接方法测定，并利用各种呈色反应来测定SOD活力，其中显色剂有NBT(四氮唑蓝)、WST-1、WST-8等。

• 蒸馏水
  
• 离心管或试管
  
• 匀浆器或研钵
  
• 低温离心机

• 待测样品中不能含有磷酸酶抑制剂，同时需避免反复冻融。
  
• 所测样本的值高于标准曲线的上限，用提取试剂稀释样品后重新测定。
  
• 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

• 植物组织样品：取正常或逆境下的新鲜植物组织，清洗干净，擦干，切碎，迅速称取，按植物组织：超氧化物歧化酶(SOD)提取试剂=0.5g：2mL的比例，加入预冷的超氧化物歧化酶(SOD)提取试剂，冰浴情况下充分捣碎或研磨，用超氧化物歧化酶(SOD)提取试剂冲洗研钵或匀浆器，合并冲洗液至该离心管，补加超氧化物歧化酶(SOD)提取试剂至10mL，4℃ 4000g离心10min，取上清液(SOD粗提液)用于酶活性的测定。
  
• 动物组织样品：动物用含有20U/mL Heparin的生理盐水(0.9% NaCl containing 20U/mL Heparin)灌流清除血液后获取组织样品；按照每100mg组织加入500μL SOD检测缓冲液的比例，用玻璃匀浆器在4℃或冰浴匀浆，4℃ 4000g离心10min，取上清液(SOD粗提液)用于酶活性的测定。
  
• 血浆或含红细胞的样品：从待测样品中分理出的血清或血浆不应有溶血，如果含有应去除红细胞后检测，如超过检测范围，用超氧化物歧化酶(SOD)提取试剂稀释后检测；血清去除红细胞的简易方法如下：用抗凝管收集血液，颠倒混匀，取至少500μL全血，4℃ 3000g离心5min，转移上清至另一新的1mL离心管中，适量生理盐水稀释后待测，亦可采用红细胞裂解液去除红细胞，如bjbalb ACK红细胞裂解液等。
  
• 细胞样品：对于贴壁细胞，由于后续用于酶活性的测定，避免使用胰酶消化细胞。可以使用细胞刮或EDTA处理细胞并收集细胞，细胞用无菌的PBS或生理盐水洗涤1次，按照每10⁶细胞加入300～500μL超氧化物歧化酶(SOD)提取试剂的比例，用玻璃匀浆器在4℃或冰浴匀浆，4℃ 10000g离心10min，取上清液(SOD粗提液)用于酶活性的测定。
  
• 上述样品准备完毕后可以BCA蛋白定量检测试剂盒测定蛋白浓度，通常10～20μg蛋白的细胞或组织匀浆液样品其中的SOD平均活力约1个活力单位左右(不同细胞和组织的差异会比较大，该活力范围仅作为初步的参考)；每种样品准备20～100μg蛋白量通常已经足够用于后续检测；根据蛋白浓度和预计的蛋白使用量，用超氧化物歧化酶(SOD)提取试剂适当稀释样品。例如小鼠肝脏组织10%匀浆液(组织和匀浆液的重量比为10%)上清，通常需要稀释10～100倍，准备好的样品如果当天测定，可以冰浴保存；如果当天不能完成测定，可以-20℃冻存，但建议尽量当天完成测定。